菜心游离小孢子培养高频胚诱导培养基优化

【目的】对菜心小孢子培养的诱导培养基进行优化,以提高胚胎诱导率,创制优良DH系应用于育种实践。【方法】设置不同蔗糖浓度和激素(6-BA和NAA)浓度组合的NLN诱导培养基,以10份不同基因型的菜心为试材,进行小孢子培养及出胚率分析,筛选最佳诱导培养基。【结果】7份材料诱导出胚状体,不同基因型间的胚胎诱导率差异显著,说明基因型是影响小孢子形成的主要因素;在无激素处理中,100 g/L蔗糖浓度NLN(NLN-10)小孢子胚诱导率最高,出胚材料诱导率在3.45～30.46胚/皿;NLN含量减半的1/2 NLN-10培养基处理出胚率约为NLN-10处理的2/3;130 g/L蔗糖浓度NLN处理出胚率显著降低,最高仅为14胚/皿,蔗糖浓度为160 g/L的NLN(NLN-16)处理未出现胚状体;在NLN-10中分别添加0.1 mg/L 6-BA和NAA,促进出胚效果最佳,出胚率最高的 Rt19006达46.93胚/皿,是不添加激素处理的1.5倍;当NLN-10 中6-BA和NAA浓度均达到0.2 mg/L时,胚胎生长发育受到抑制。【结论】筛选出可有效促进菜心小孢子出胚的诱导培养基配方,即100 g/L蔗糖浓度的NLN+6-BA 0.10 mg/L +NAA 0.10 mg/L。     

Use of an electromagnetic technique to determine sodicity in saline-sodic soils

Soil sodicity is an increasing problem in arid‐land irrigated soils that decreases soil permeability and crop production and increases soil erosion. The first step towards the control of sodic soils is the accurate diagnosis of the severity and spatial extent of the problem. Rapid identification and large‐scale mapping of sodium‐affected land will help to improve sodicity management. We evaluated the effectiveness of electromagnetic induction (EM) measurements in identifying, characterizing and mapping the spatial variability of sodicity in five saline‐sodic agricultural fields in Navarre (Spain). Each field was sampled at three 30‐cm soil depth increments at 10–30 sites for a total of 267 soil samples. The number of Geonics‐EM38 measurements in each field varied between 161 and 558, for a total of 1258 ECa (apparent electrical conductivity) readings. Multiple linear regression models established for each field predicted the average profile ECe (electrical conductivity of the saturation extract) and SAR (sodium adsorption ratio of the saturation extract) from ECa. Despite the lack of a direct causal relationship between ECa and SAR, EM measurements can be satisfactorily used for characterizing the spatial distribution of soil sodicity if ECe and SAR are significantly auto‐correlated. These results provide ancillary support for using EM measurements to indirectly characterize the spatial distribution of saline‐sodic soils. More research is needed to elucidate the usefulness of EM measurements in identifying soil sodicity in a wider range of salt and/or sodium‐affected soils.     

EM38在黄河三角洲地区土壤盐渍化快速检测中的应用研究

针对目前黄河三角洲地区存在的土壤盐渍障碍问题,以该地区典型地块为研究对象,电磁感应仪EM38检测与田间采样相结合,分析土壤电导率的剖面分布特征,建立磁感式表观电导率与土壤电导率间的回归模型,并对运用电磁感应仪EM38划分土壤盐渍剖面类型进行探讨。结果表明:研究区表层土壤盐分具有较强的表聚性与变异强度,剖面各土层电导率间存在着关联性;土壤电导率与磁感表观电导率EMh、EMv间呈极显著的相关关系和对数相关关系,EMh对浅层土壤电导率的解译精度较高,对深层土壤电导率、EMv的解译精度要高于EMh;利用电磁感应仪EM38可将研究区土壤盐渍剖面准确划分为表聚型、底聚型与均匀型三种类型,其中表聚型与底聚型是研究区最主要的盐渍剖面类型,进一步的统计分析证明了采用电磁感应仪EM38对土壤盐渍剖面的分类结果具有较高的精度与可信度。该结果对研究黄河三角洲地区土壤盐渍化的发生机理、预测与评估该地区土壤盐渍化的发生发展具有重要参考意义。     

芝麻不同品种对空间诱变的敏感性及生物效应研究初报

５个纯合芝麻种质材料搭载我国发射的第１７颗返地式卫星空间处理１５ｄ后，Ｍ０种子外部性状与未处理对照间无明显变化，Ｍ１表现出叶形、育性等外部形态性状变异，品种间敏感性不同。     

夜温对蝴蝶兰成花诱导的研究

在智能化温室内,通过盆栽试验,采用指标测量、方差分析、多重比较等方法得出:适宜的夜温在蝴蝶兰花芽分化中起着非常重要的作用,18℃是花芽分化的最佳夜温。虽然夜温在15℃时,花茎抽出最早,但花茎萌发率比18℃夜温处理低6个百分点,花苞数平均少1.8个;而18℃夜温处理的蝴蝶兰花茎萌发率比22℃处理高14个百分点,花苞数平均高3个。     

桃叶片再生不定芽的研究

以桃栽培品种曙光、金童5号和甜桃王试管苗叶片为外植体,研究了基本培养基、植物生长调节剂种类及质量浓度组合、基因型和试管苗继代次数等因素对叶片再生的影响。结果表明,适宜暗培养的培养基为LP+1.5mg·L-1TDZ+0.15mg·L-1NAA;光培养基为LP+0.5mg·L-1TDZ+0.3mg·L-1KT+0.3mg·L-1NAA和LP+0.6mg·L-1TDZ+0.3mg·L-1KT+0.4mg·L-12,4-D;金童5号和曙光具有较强的再生能力,再生率分别为21.8%和14.5%;曙光和金童5号试管苗继代第1～11次叶片的再生能力与继代前3次愈伤组织相比形成率较高;曙光再生苗在培养基1/2MS+0.5mg·L-1NAA上生根率为100%,平均生根条数为7.9。     

甘蔗新品种黔糖4号腋芽离体快繁技术研究

用黔糖4号作供试材料,选择蔗茎嫩梢部茎腋芽作接种外植体进行离体培养;外值体消毒采用75%酒精浸泡8～10s后用0.1%HgCl2消毒15min复合消毒,多次清洗再接种;腋芽诱导培养基采用(液态)1/2MS 0.25mg/L(6-BA);丛芽诱导增殖培养基采用(固态)MS 2.5mg/L(L-BA) 0.2mg/L(KT),每隔15～20d转基继代一次,繁殖倍数可达30倍以上;生根培养基采用(固态)1/2MS 3.0mg/L(NAA) 0.1mg/L(IBA),添加2.5mg/L的MET,使丛苗根粗苗壮;炼苗后移至“沙土沙”的苗床假植,再单株假植至20cm左右高的苗时进行大田定植;摸索总结了一套黔糖4号腋芽离体快繁种苗技术,并详细介绍了操作要领,提出了有关环节中应注意的五个问题和相应的解决方法。     

刺嫩芽有性繁殖试验初报

刺嫩芽是近几年来市场上倍受人们青睐的1种森林蔬菜。在刺嫩芽野转家栽培过程中,由于种子自然萌发能力较弱,苗木供应不足,阻碍了其野转家栽培的进程。湖北省林业科学研究院鹤峰森林药材研究所经过2 a时间的研究,其结果表明:经过用醋处理了的刺嫩芽种子出苗量最多,为35株/m2,而未处理的仅为5株/m2。这一研究成果保证了刺嫩芽野转家栽培的苗木来源。     

余甘子丛生芽诱导和快速繁殖研究

本试验以余甘子嫩芽和嫩枝茎段为外植体 ,在 MS培养基中进行离体繁殖和培养试验。结果表明 ,添加细胞分裂素 BA对丛生芽诱导有明显促进作用 ,激素组合以 BA与 NAA为最好 ,嫩芽外植体诱导丛生芽的最适培养基为 MS BA0 .5 mg/ L NAA 0 .1mg/ L,分化率达 90 %以上 ;嫩枝茎段旅导丛生芽所需的 BA浓度相对高些 ,最适培养基为 MS BA 2 .0 mg/ L NAA 0 .1mg/ L,分化率达 5 6 .7% ,丛生芽增殖生长培养基为 MS BA 0 .1mg/ L NAA 0 .1mg/ L Na H2 PO45 0 mg/ L。生根培养基为 1/ 2MS NAA 0 .2 5 mg/ L IBA 0 .2 5 mg/ L ,生根率在 30 %左右